Meine nächsten 5 Mikroskopier-Übungen

[font="Arial"]Hallo Pilzfreunde,
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[font="Arial"]nachdem ich Euch meine ersten 5 Mikroskopier-Übungen gezeigt habe folgen die nächsten 5.
Bitte beachtet dass das fast meine ersten Mikro-Bilder sind.
Alle Pilze waren wieder Exsikkate. Alles waren Helmlinge, weil ich mich derzeit intensiver mit Helmings-Schlüsseln beschäftigte.
In diesem Schritt versuchte ich auch die nächste Zystiden-Art zu üben: Die Kaulozystiden.

Das kam raus:
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[hr]
[font="Arial"]Tja bei diesem war ich nicht sicher. Ich wusste nicht mal ob der rechte und der link der gleiche Pilz ist.


Die Cheilozystiden linker Pilz:
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[font="Arial"]
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[font="Arial"]Die Cheilozystiden rechter Pilz:

[/font]
[font="Arial"]Pleurozystiden waren nicht vorhanden
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[font="Arial"]Ergebnisse Sporen linker Pilz:
(5.1) 5.5 - 6.6 (6.7) x (4.3) 4.35 - 5.39 (5.4) µm
Q = (1) 1.1 - 1.3 (1.5) ; N = 12
Me = 6 x 5 µm ; Qe = 1.2
[/font]
[font="Arial"]Ergebnisse Sporen linker Pilz:
8.3 - 9.4 x 4.9 - 6.5 µm
Q = 1.6 - 1.7 ; N = 6
Me = 8.8 x 5.5 µm ; Qe = 1.6
[/font]
[font="Arial"]Ergebnis: Beide sind der Grünschneidige Helmling (Mycena viridimarginata).
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[hr]
[font="Arial"]Ebenso unklar war der nächste.
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[font="Arial"]Fundort:
ca. 550 müNN. ca. N50, O12, zwischen Fichten
Fundzeit:
04.09.2015
Wuchsform:
gesellig
Hutform:
Halbrund, fast glockig
Huthaut:
weiß, grau überhaucht, Zentrum bräunlicher Fleck, fühlt sich fettig und wachsartig an
Hygrophanität:
nein
Hutrand:
normal
Lamellen:
reinweiß, mit Zwischenlamellen, ohne Y-Gabeln
Lamellenschneiden:
bewimpert
Lamellen- Hutübergang:
deutlich frei
Fleisch:
weiß, sehr zerbrechlich
Stiel:
weiß, seidig glänzend
Stielbasis:
normal, Basalscheibe vorhanden aber nicht ausgeprägt
Größe:
Hutdurchmesser ca. 1 cm; Stiellänge 5 cm, Stieldurchmesser 0,5 mm
Sporenpulverfarbe:
nicht getestet
Geruch:
nicht getestet
Geschmack:
nicht probiert


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[font="Arial"]Hier die Mikrobilder:



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[font="Arial"]Ergebnisse Sporen:
5.4 - 8.2 x 3.2 - 4 µm
Q = 1.54 - 2.1 ; N = 7
Me = 7 x 3.6 µm ; Qe = 1.9
[/font]
[font="Arial"]Ergebnis: Es ist der Rinden-Postament-Helmling (Mycena stylobates).
[/font]
[hr]
[font="Arial"]Der nächste - noch ein Helmling:

Fundort:
ca. 550 müNN. ca. N50, O12, im Laubwald
Fundzeit:
11.09.2015
Wuchsform:
paarweise
Hutform:
halbrund, alt abgeflacht
Huthaut:
grau
Hygrophanität:
vermutlich ja
Hutrand:
leicht gerieft
Lamellen:
weiß, mit Zwischenlamellen, ohne Y-Gabeln
Lamellenschneiden:
weiß beflockt
Lamellen- Hutübergang:
leicht ausgebuchtet angewachsen und herablaufend
Fleisch:
grau
Stiel:
grau, hohl, bereift
Stielbasis:
normal
Größe:
Hutdurchmesser ca. 1,5 cm; Stiellänge 7 cm, Stieldurchmesser ca. 1,5 mm
Sporenpulverfarbe:
es kam nichts heraus
Geruch:
etwas muffig und leicht nach Rettich
Geschmack:
nicht probiert


[/font]
[font="Arial"]Mikroskopisches Ergebnis:

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[font="Arial"]Ergebnisse Sporen:
(6) 6.5 - 7.7 (9.5) x (3.2) 3.5 - 4 (4.6) µm
Q = (1.5) 1.7 - 2.1 (2.2) ; N = 17
Me = 7.2 x 3.8 µm ; Qe = 1.9
[/font]
[font="Arial"]Die Bestimmung war aufwändiger, aber hat dann doch ein eindeutiges Ergebnis gebracht.
Es ist der Graue Nitrathelmling (Mycena leptocephala).
[/font]
[hr]
[font="Arial"]Noch ein Helmling:

Fundort:
ca. 550 müNN. ca. N50, O12, auf Rasen, neben Hainbuche
Fundzeit:
13.09.2015
Wuchsform:
gesellig
Hutform:
stumpfkegelig
Huthaut:
schwarzbraun
Hygrophanität:
nicht festgestellt
Hutrand:
gerieft
Lamellen:
dunkelgrau, keine Queradern, mit Zwischenlamellen
Lamellenschneiden:
weiß
Lamellen- Hutübergang:
nicht erkennbar
Fleisch:
zerbrechlich
Stiel:
schwarzbraun, hohl, bereift
Stielbasis:
befilzt, weiß
Größe:
Hutdurchmesser ca. 0,5-1 cm; Stiellänge ca. 4-6 cm, Stieldurchmesser ca. 1,5 mm
Sporenpulverfarbe:
nicht getestet
Geruch:
fruchtig
Geschmack:
nicht probiert
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[font="Arial"]
[/font]
[font="Arial"]
[/font]
[font="Arial"]HDS:

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[font="Arial"]Der Pilz zeigte die Cheilos und Pleuros nur spärlich und untypisch:


Basidien:

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[font="Arial"]Aber die Kaulozystiden entlarvten ihn:

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[font="Arial"]Sporen:

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[font="Arial"]Ergebnisse Sporen:
7.4 - 8 x 4.4 - 4.86 µm
Q = 1.6 - 1.78 ; N = 9
Me = 7.6 x 4.6 µm ; Qe = 1.6
[/font]
[font="Arial"]Ergebnis: Das ist der Graublättrige Helmling (Mycena aetites).
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[hr]
[font="Arial"]Und wieder ein Helmling...

Fundort:
ca. 550 müNN. ca. N50, O12, auf Rasen, neben verschiedenen Laubbäumen
Fundzeit:
13.09.2015
Wuchsform:
gesellig
Hutform:
stumpfkegelig bis glockig
Huthaut:
grau
Hygrophanität:
nicht festgestellt
Hutrand:
gerieft
Lamellen:
grau, mit Queradern, mit Zwischenlamellen
Lamellenschneiden:
normal
Lamellen - Hutübergang:
nicht erkennbar
Fleisch:
zerbrechlich
Stiel:
grau, hohl, bereift
Stielbasis:
normal
Größe:
Hutdurchmesser ca. 0,5-1 cm; Stiellänge ca. 4-7 cm, Stieldurchmesser ca. 1,5 mm
Sporenpulverfarbe:
nicht getestet
Geruch:
fruchtig
Geschmack:
nicht probiert


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[font="Arial"]Pleuros & Cheilos ließen sich nicht auseinander halten:

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[font="Arial"]Doch die Kaulos entlarvten ihn:

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[font="Arial"]
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[font="Arial"]Ergebnisse Sporen:
6.7 - 7.8 x 4.1 - 5.38 µm
Q = 1.44 - 1.7 ; N = 9
Me = 7.3 x 4.7 µm ; Qe = 1.6

Und es ist der Graue Nitrathelmling (Mycena leptocephala).
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[hr]
[font="Arial"]Ja das war's wieder mal.
Es folgen bald neue Mikroskopier-Übungen.
Ich freue mich auf Eure Kommentare und Verbesserungs-Tipps.
Die niedrigere Sättigung des Kongos habe ich inzwischen schon geübt. (ist bei den obigen Pilzen noch nicht - da wusste ich das noch nicht)

Beste Grüße
Dieter[/font]

Zitat von Beorn

Aber: Die Bilder sind enorm gut dafür, daß du gerade am Anfang stehst. Und zudem noch mit Trockenmaterial gearbeitet hast.

DAAAANKE Pablo.

Zitat von Beorn

Auch die Kontraste sind jetzt noch besser

Die sind jetzt inzwischen sogar noch viel besser, denn ich habe 1 Woche lang intensiv Köhlersche Beleuchtung gelernt, am Mikroskop herumgebastelt, und die Köhlersche Beleuchtung dann bis ins Detail geübt. Das Ergebnis folgt bald - ich war erstaunt wieviel das aus macht.

Zitat von Beorn

Du hast das Präparat demnach wohl nur in Kongo angefärbt und dann aber in Wasser (oder KOH?) transferiert zum beobachten?

Ja, inzwischen färbe ich, lasse einwirken, sauge ab und transferiere in die Untersuchungsflüssigkeit.
KOH nehme ich, aber auch Wasser, GSM, Chloralhydrat, und anderes. Ich experimentire viel.

EDIT:
Nun brauche ich L4. Das bekomme ich nirgends. Weiß jemand wo ich es bekomme?
Wenn nicht: Ich werde es selbst herstellen wenn ich es nicht bekomme.
Ich bitte um Nachricht falls jemand was mit haben will. Für nen Fünfer pro Flascherl dürfte das machbar sein.
L4 ist nicht mehr notwendig.

Beste Grüße
Dieter

Hi Pablo,
also L4 soll das "non plus ultra" zum Aufweichen von Exsikkaten sein. EDIT: das ist falsch.
Es ist ein Glycerinpuffer. Im Mykoshop nur incl Pigmenten als L4C und L4T erhältlich.
L4 erfand Herr Clemencon. Es wurde dann von Erb/Matheis modifiziert (hauptsächlich mit Phenol).
Originalformel: 0,72 g KOH p. a.; 0,76 NaCI krist. p. a.; 16 ml (20 g) Glycerin; 0,5 ml Invadin IFC (nicht mehr erhältlich) konz.; puriss. 84 ml destilliertes Wasser.
Das Invadin ist nicht mehr erhältlich, für mich als ehemailger Hobby-Chemiker aber überhaupt kein Problem.
Beste Grüße
Dieter

Hallo Pablo,
nein dafür ist das nicht gut. Für Porlinge ist KOH3% gut. Ich testete es an einem - und ja ich kann sagen: funktioniert.
Es geht aber auch auch Glamalc. Das weicht weniger auf und bläst die Zellen nicht auf. Hab ich auch getestet. Tut was es verspricht.
Ich werde berichten ob ich für Porlinge Glamalc oder KOH besser finde. Momentan habe ich noch zu wenig Erfahrung.
EDIT: Bitte beachten: Mit "aufweichen" ist nicht der Schritt "Quellen" gemeint.
Beste Grüße
Dieter

Zitat von Ingo  W

Ich finde ja, du bist ein Natur-Talent, was das Mikroskopieren betrifft.
Zu deinen sehr schönen Mikros liest es sich auch recht einfach, wie du zu einem Namen kommst. Da steckt natürlich einiges an Arbeit drin.

Danke Ingo, aber ich versuche es nur Euch nachzumachen

Zitat von Ingo  W

Ein schönes von Mycena leptocephala ist doch immer auch der nitröse Geruch (nicht muffig, Rettich oder fruchtig wie du angegeben hast) und die Sporenmaße würde mir für das Taxon auch nicht passen. Sollten die sich nicht irgendwo bei 7,5-10 x 4-6 bewegen?
Und wie ist es mit den Schnallen? Pileozystiden?
Mag schon sein, wenn man "seine" Arten dann kennt, das man nicht mehr alles anschauen muss, aber bis dorthin würde ich schon das volle Programm durchziehen.

Deine Zweifel sind absolut berechtigt, denn ich hatte sie auch.
Ich kann es erklären:
Der Geruch "Nitrös" ist ein Problem für mich. Matthias weiß das, gell - meine Nase kann Nitrös gar nicht bis nur schwach riechen und macht alles mögliche daraus. So waren wir neulich unterwegs und Matthias sagt "oh der riecht aber nitrös" - ich sagte "gibt her" - schnuffelte und sagte "der riecht nach überhaupt nichts"... so ging es uns schon öfter. Wenn ich ihn gleich vor ort zerreibe kann ich ein bisschen wahrnehmen...
Seit ich das weiß gebe ich auf "nitrös" nicht mehr viel. Es kommt wahrscheinlich vom Lasern meiner Nase. Seit dem rieche ich nicht mehr so viele Gerüche und auch nicht mehr so stark.

Die Sporenmaße:
Hier kommen wir zu einem Thema dass ich speziell untersuche.
Nämlich die Frage "Wie quelle ich ein Exsikkat so, dass die Zellen die ursprüngliche Größe wieder annehmen und dabei auch keine Strukturen zerstört werden?".
Ich dachte es gibt eine eindeutige Antwort - aber genau das Gegenteil ist der Fall. Es gibt viele Ansichten, viele Falschaussagen, veraltetes Wissen etc.
So zum Beispiel die Theorie man müsse beim Quellen erhitzen bis Blasen kommen ist falsch, zumindest wenn beide Bedingungen der obigen Frage efüllt sein sollen. Und das mit dem Erhitzen steht sogar im Buch der Bücher Erb/Mattheis. Auch ich erhitzte noch bis vorgestern bis Blasen kamen.
Es läuft auf 3 wesentliche Fragen hinaus:
- mit welcher Flüssigkeit quillt man? (für mich 75% geklärt)
- wie lange quillt man? (für mich 50% geklärt)
- bei welcher Temperatur quillt man? (99% geklärt)
Diese Fragen untersuche ich schon seit 6 Wochen und erst heute habe ich wieder entscheidende neue Tipps von einem bekannten Exsikkat-Sammler bekommen und bin noch lange nicht am Ende meiner Recherchen und Versuche angelangt.
Zu dem Zeitpunkt der Sporen-Aufnahme oben waren diese Fragen/Antworten noch weitgehend unklar (und auch noch nicht so von Bedeutung) - und das Ergebnis entsprechend nichtsaussagend. Aber ich wusste das zu diesem Zeitpunkt schon.
Ich werde Euch berichten was ich herausfinde zu diesem Thema denn es ist für einen Exsikkatierer wie mich von großer Wichtigkeit.
ABER: Wie immer sind Eure Tipps zu diesem Thema unheimlich willkommen.
(Hinweis: mit "quellen" ist nicht das Aufweichen oder Einweichen gemeint - das wird oft vermischt und verwechselt)

Schnallen? Pileozystiden?
Ja, diese hätte ich noch genauer untersuchen bzw hier nennen können/müssen - aber: Nach dem Mycena-Schlüssel blieben nur 2 Arten übrig. Ich war unsicher. Ich fragte Matthias, Ihr wisst ja - ein wahrer Kenner der Mycenas - er meint die Kaulos lassen nur leptocephala zu - und das glaube ich ihm blind
Was dazu kommt: zu dem Zeitpunkt konnte ich noch keine HDS richtig untersuchen - das kann ich erst einigermaßen seit 1 Woche - ich zeige Euch bald die schönen Ergebnisse von wunderschönen Hutdeckschichten, Pigmenten usw. Das ist echt ein tolles interessantes Thema.

Beste Grüße
Dieter

Danke Jürgen Das spornt an.
Beste Grüße
Dieter