Hallo Stefan
Du meinst mit der neusten Version -> Fungi Europaei 1A Agaricus & Allopsalliota (2013)-L.A. Parra ?
BG Andy
Nein ich meine den Fungi non delineati-Band "Agaricus" von Parra und Capelli, der 2015 oder 2016 (wenn ich das richtig im Kopf habe) erschienen ist.
l.g.
Stefan
Hab gerade mal etwas gestöbert, da ich die Art nicht kenne. Kann gut hinkommen hast du mal im Parra und/oder im neuen Parra/Capelli geschlüsselt? Das ist leider bei einer so komplizierten Gattung wie Agaricus leider notwendig.
l.g
Stefan
Hi,
hast du auch nach Cheilozystiden geschaut?
l.g.
Stefan
ich wäre hier bei irgendeinem der Scheibchentintlinge.
Hi,
das sieht mir sehr nach einer Tulosesus-Art aus. Bei den jungen FK kann man Pileotystiden erahnen + das Welkverhalten passt nicht zu einer Parasola.
l.g.
Stefan
Hi,
meine Pilzfreundin Heidrun meinte, dass früher die Flockis in ihren Streifgebieten selten waren. Ich kann nur für mich sprechen, dass ich Hexen zu DDR-Zeiten gar nicht gesehen habe. Erst dann in den 2000er Jahren. Früher habe ich auch keine Netzhexen im Stadtgebiet von Dresden gesehen. Ab den 2000ern stehen die in DD überall unter den Linden, wenn die Witterung es zulässt. Meine Beobachtungen sind allerdings nicht wirklich valide, da ich mich erst seit Mitte der 90er mit den einfachen Röhrlingen, bzw. mit der Pilzwelt intensiver befasst habe.
l.g.
Stefan
Hi,
finde ich anhand der Bildlage schwierig. R. integra kenne ich nur von Nadelbäumen. Zur Absicherung der Bestimmung schaue ich mir auch immer die Sporen unterm Mikro an.
Dein Fund scheint auf Druck in der Trama zu bräunen, was aus meiner Sicht auf R. graveolens hindeutet. Der Fischgeruch bei den Heringen ist oft nicht sofort da. Meist braucht es etwas Zeit bis sich die typische Bäunung und der Fischgeruch ausbildet.
l.g.
Stefan
Hi,
noch eine Warnung von mir. Die Blumentopflepioten können sehr gefährlich sein. L. eleiophylla z.B. Wenn in dem Haushalt Kinder sind, dann besser absammeln und entsorgen. So lange die Fruchtkörper nicht gegessen werden, sind sie harmlos.
l.g.
Stefan
Hider steht inzwischen in der Gattung Hymenopellis.
Hallo Stefan,
der steht meist an Buchenstümpfen,
viele Grüsse
Matthias
Hi,
ich finde den sehr oft einfach scheinbar in der Streu wachsend.
l.g.
Stefan
Hi,
der steht inzwischen in der Gattung Hymenopellis.
l.g.
Stefan
Hallo Ditte,
vielen Dank für deine Einschätzung. Mich hat vor allem der fruchtige Geruch kirre gemacht. Aber klar, wir hatten hier auch einige Wetterkapriolen, da ist das nicht verwunderlich.
l.g.
Stefan
Hi
und fest steht, dass beide schon deutliche Trockenschäden haben. Das macht die Bestimmung nicht einfacher. Nimm lieber frische Exemplare. Damit hast du es deutlich leichter.
I.g.
Stefan
Hi,
ich hab das auch mit Tricholomopsis-Christoph besprochen. Wir sind da einer Meinung, dass für die Collybia-Lepistas eine neue Kleingattung geschaffen wird. Die Pilze zu Collybia zu stellen, macht ökologisch und morphologisch keinen Sinn.
l.g.
Stefan
Hallo liebe Risspilz-Freaks,
in Fund von Enno zu unserer Fachgruppenexkursion letzten Samstag.
Fundort: Wegrand, geschotterter Weg, so dass Kalkeinfluss möglich ist. Begleitbäume: Pinus, Betula, Quercus, Fagus, Picea, ca. 300 m Seehöhe, ansonsten saurer Boden
Lamellen: jung reinweiß, im Alter dann ockerlich
Stielbereifung: wollig überfasert, habe im oberen Stieldrittel keine Zystiden gefunden
Geruch: fuchtig, mit muffiger Beikomponte. Erinnert an I. fraudans und corydalina, so wie ich den kenne. Allerdings habe ich bei meinen Fraudans - und Corydalina-Funden immer noch eine stechende Geruchskomponente dabei, die mir hier gefehlt hat.
Trama scheint von zu bräunen. Im Schnittbild ist davon nix zu sehen.
Mikrodaten:
Sporen: 8-10µm Länge,
Zystiden: recht dünnwandig, kurz viele unter 50 µm, einige bis ca. 65 µm Länge, Breite ca 15 µm
Auffällig ist, dass viele Zystiden angedeutet kopfig sind. Die Spitze ist interessant. Unterm Mikro erscheinen die bei mir teilweise in einer anderen Farbe. Fast so als hätten sie eine Art "Kappe".
Bilder:
pilzforum.eu/attachment/516665/
Mikrobilder:
Mir fällt hierzu nur I. corydalina ein. Leider habe ich meine sicheren Corydalina-Funde bisher mir leider mikroskopisch nicht genau angesehen. Was meint ihr zu dem Fund?
l.g.
Stefan
Hi,
warum ausgerechnet P. adiposa? Der ist kein Speisepilz. Ansonsten findest du den auch locker selbst. Einfach im Herbst ein paar liegende Buchenstämme abgrasen. Der sollte schnell zu finden sein.
l.g.
Stefan
Gibt's diese Tax Ref Liste irgendwo zum Download oder als Link?
Hi,
die deutsche Tax-Ref-Liste findest du in Mykis, bzw sind das die Angaben, die du auf Pilze-Deutschland.de findest.
Mycobank und Index Fungorum solltest du mit einer Suchmaschine finden. Beides sehr nützliche Tools.
l.g.
Stefan
Hi,
die deutsche Tax-Ref-Liste ist zwar nicht die aktuellste, aber zumindest "sauber", da viele Experten dort mitarbeiten. Zumindest sind dort auch die wichtigsten wiss. Synonyme gelistet, was enorm hilfreich ist. Ein Vorteil ist auch, dass die wiss. Namen nicht sofort geändert werden. Da wird abgewartet bis sich dann die Umbenennung in der Community festigt. Gerade jetzt die Sache mit "Collybia" nuda. Ich gehe davon aus, dass die betreffenden Arten mittelfristig von Lepista in eine neue Kleingattung wandern werden. Morphologisch und ökologisch macht das keinen Sinn die Art zu Collybia zu stellen.
l.g.
Stefan
Das ist ja Mist.
Könnte man nicht einfach erst einmal die Äste absägen auf denen die Fruchtkörper wachsen? Sind ja bis jetzt nur zwei. Oder ist der Pilz (mutmaßlich) bereits im ganzen Baum?
Das kannst du probieren. Die Zeit wird es zeigen, ob dann neue FK am Baum wachsen.
l.g.
Stefan
Alles anzeigenGuten Morgen!
Der Sporenabdruck zeigt heute früh bereits braunes Sporenpulver.
Wie gesagt, kein Mikroskop vorhanden. Hab's nur so zur Übung gemacht. (Hatte bisher nur mal ein paar Weißsporer ausprobiert. [Maipilz, violetter R.ritterling].)
Und damit nochmal ein Dank an alle hier im Thread.
Gruß
Stefan
L. nuda ist kein Weißsporer. Dessen SPP ist deutlich rosa.
Hi,
sieht sehr nach Trametes hirsuta aus. Kannst du bitte mal die Porenschicht zeigen? Auch gerne Mal ein Schnittbild der Länge nach durch eine Konsole.
l.g.
Stefan
Ah, auf dem Foto sehe ich eine ganz leichte Rotfärbung im Hutfleisch. Das wäre beim Wiesenchampignon eher im Stielfleisch zu beobachten. Dennoch irritiert mich das sehr subtile Röten etwas, kenne das vom Stadtchampignon deutlich ausgeprägter. Wie sah denn die Stielbasis aus? Gab es da eine ganz leichte Gelbfärbung am Ansatz? Das würde dann wieder für den Wiesenchampignon sprechen.
Die ganze Sektion Agaricus ist hier raus. Da passt das Velum/Stielring nicht! Das ist schon was aus den Sektionen Bivelares/Chitonioides wegen des aufsteigenden Ringes.
l.g.
Stefan
Hi,
sieht mir sehr nach A. biorquis aus. Zur Absicherung würde ich den dennoch unters Mikro tun.
l.g.
Stefan
Hi,
sieht mir sehr nach Arrhenaterum/Glatthafer aus.
l.g.
Stefan
Hi,
bin auch dabei. Zu zeigen habe ich auch was.
l.g.
Stefan
Hi,
du scheinst dich mit der Gattung nicht sonderlich gut auseinander gesetzt zu haben. In der ersten Frage wird in den gängigen Schlüsseln nach Cheilozystidenformen gefragt. Lange Zystiden mit "körniger" Oberfläche an der Spitze versus kurzen, zweizelligen "Brennhaarzystiden".
Ich sehe keines von beiden auf deinen Mikrobildern. Wenn du auch keine findest, dann wird es wohl keine Melanoleuca sein.
Hinzu kommt noch, dass die Gattung alles als einfach in der Bestimmung ist. Antonin sitzt wohl gerade daran. Wie weit er mit der Überarbeitung ist? Keine Ahnung. Auf jeden Fall muss dort Ordnung geschaffen werden mit genetischen Untersuchungen.
l.g.
Stefan
Nee Stefan, sicher nicht.
So langsam bekomme ich den Eindruck, ich wohne am falschen Ort. Warum nur wachsen gefühlt die Hälfte aller pilzkranken Pflanzen in meinem Garten
Das kommt dir nur so vor. Im Garten meiner Oma, Eltern, bzw. hier im Umkreis gibt es auch sehr viele Phytos gerade. Die Witterung ist dafür gerade insgesamt günstig. Das ist alles.
l.g.
Stefan
