Hallo Reinhard,
bei deiner Bestimmung gehe ich zwar mit, was dein Pilzbuch über die Gattung Pseudohydnum schreibt, stimmt allerdings nicht. Da gibt es durchaus mehrere Arten, siehe z.B.
Spirin et al., Taxonomy and multigene phylogeny of Pseudohydnum (2023).
Björn
Hallo Corne,
und ich habe bei deinem ersten Foto mit dem Hinweis aufs Lindenholz direkt gedacht: Da muß man doch eigentlich Sarcoscypha jurana draus schnitzen 
Björn
Hallo Eva,
je nach Pilzlage kann so ein Zoom-Meeting auch schon mal bis nach 22 Uhr gehen 
Björn
Hallo zusammen,
ich werde auch dabei sein und kann Euch mit Tomentellas und Phytos zuballern Aber ein bißchen was Besinnliches zum zweiten Advent habe ich auch noch parat.
Björn
Hallo Bernd,
der Schlüssel liefert im Zweifelsfall immer nur eine kleine Auswahl an Vertretern aus der jeweiligen Gattung (deshalb auch immer der Verweis auf weiterführende Literatur). Man kann also mit der Substratangabe nicht einfach auf L. crinigera schließen. Da muß man schon noch genauer schauen, was es in der Gattung alles gibt, wie man die Arten dort unterscheidet etc.
Björn
Hallo Bernd,
bei Schlüsselschritt 153 wird ja abgefragt, ob die Sporen glatt oder gestreift sind. Da sie bei dir ganz klar gestreift sind, lande ich dann bei Lentomitella.
Björn
Hallo zusammen,
den Großteil unserer Funde aus Lengerich hatte ich ja gestern schon eingestellt, aber das Beste habe ich mir natürlich für den Schluß aufgehoben. Im Kalk-Buchenwald war unter praktisch jedem Stück Totholz eine Tomentella zu finden. Das ist ja in der Mehrzahl der Fälle etwas, was man entweder gekonnt ignoriert oder was einen in tiefen Bestimmungsfrust stürzt. Aber manchmal meinen es die Tomentellen ja auch gut mit den Finder:innen und man kann sie benamsen.
1. Eine Tomentella ohne Schnallen und mit sehr lockerem Hymenophor und lateral gemessenen Sporengrößen von 6.1+-0.4 µm x 4.8+-0.3 µm, Q=1.3+-0.1, 5.7-7.3 µm x 4.4-5.2 µm, Q=1.1-1.5, womit ich dann zu Tomentella badia/Thelephora allobadia komme.
2. Tomentella in orange macht meistens Spaß: Hier ist es Tomentella/Thelephora bryophila, erkennbar an den runden Sporen mit amyloidem Apikulus.
3. Hier mal eine Tomentella in haselnußbraun. Sporen messen lateral 7.7+-0.5 µm x 5.9+-0.3 µm, Q=1.3+-0.1, 6.8-8.7 µm x 5.3-6.4 µm, Q=1.2-1.5 und erscheinen mir unregelmäßig rundlich. Die kurzzelligen Subhymenialhyphen bringen mich dann zu Tomentella sublilacina/Thelephora wakefieldiae
4. Nochmal eine Tomentella in Orange. Die Sporen messen 6.4+-0.4 µm x 5.2+-0.3 µm, Q=1.2+-0.1, 5.7-7.3 µm x 4.8-5.9 µm, Q=1.0-1.4, Basidien sind in Wasser mit harzigen Ausscheidungen umhüllt, die sich in KOH gelblich-grün lösen. Also Tomentella/Thelephora punicea
5. Ein bißchen Frust muß dann doch sein Sporen messen 7.2+-0.5 µm x 5.9+-0.5 µm, Q=1.2+-0.1, 6.5-8.1 µm x 5.1-6.7 µm, Q=1.0-1.4. Hier würde ich zu Tomentella/Thelephora neobourdotii tendieren, aber da müßten die Subikularhyphen inkrustiert sein, was man bei meinen Fotos in 3% KOH nicht sieht. Ich hatte auch noch ein Präparat in Wasser gemacht, da ist dann eine Inkrustierung vorhanden.
Björn
Hallo Sabine,
ja, ich meinte das flüssige Mittel.
Björn
Hallo Karl,
also wenn ich mir Ingos Bilder anschaue, die ja sehr dem, was bei Franchi und Marchetti abgebildet ist, entsprechen, kann ich mir nicht vorstellen, daß das was Tanja in Lengerich und an anderen Stellen aus den Kalkmagerrasen zieht. Aber warten wir mal die Sequenzierung ab.
Was H. mucronella angeht, scheint H. mucronella s. str. am besten zu passen. Ich hatte meinen Fund aber auch bei inaturalist eingestellt und Filip Fuljer aus Bratislava hat Interesse bekundet, den Fund zu sequenzieren.
Björn
Hallo Sabine,
ganz sicher kann ich es nicht sagen, aber ich meine schon, daß beim Schütterzahn auch Espen wuchsen. Den Geruch würde ich aber definitiv nicht als Vanille bezeichnen, sondern eher sehr unangenehm nach Desinfektionsmittel (Betaisodona).
Björn
So, die 100 Bilder pro Beitrag waren erschöpft, also hier noch die restliche Tomentella bryophila
Björn
Hallo zusammen,
da eine Reihe von Pilzfreunden am letzten Wochenende einen Pilzkurs am Heiligen Meer besucht hat, haben wir uns am Sonntag in Lengerich zum Besuch einiger Magerrasen auf Kalk verabredet. Das hat sich auf jeden Fall gelohnt, da wir einige tolle Funde machen konnten.
1. Scutellinia barlae wuchs stellenweise massenhaft auf dem kalkhaltigen Lehmböden
2. Hygrocybe mucronella mit Sporen von 7.5+-0.5 µm x 4.6+-0.3 µm, Q=1.6+-0.1, 6.6-8.6 µm x 4.3-5.2 µm, Q=1.4-1.9
3. Auch immer wieder in großen Gruppen zu finden: Geoglossum cookeanum
4. Phyllactinia orbicularis ex Fagus sylvatica
5. Sistotrema confluens
6. Das Highlight des Tages und ein Erstnachweis für NRW: Eine violette Ramariopsis
7. Tulostoma brumale
8. Lindtneria bryophila
9. Hypocopra merdaria
10. Tomentella bryophila
Hallo zusammen,
beim letzten Zoom-Meeting hatte Karl ja einige schöne Funde aus dem Depot gezeigt und mir nahegelegt, dort am Wochenende mal eine Runde zu drehen (auch wenn er selber am Heiligen Meer war). Gesagt, getan und so ging es dann am Samstag Morgen relativ früh zusammen mit Agata auf Tour. Und wie von Karl angekündigt, wurden wir nicht enttäuscht, denn es gab mal wieder den totalen Pilz-Overflow.
1. Clavaria argillacea in nicht vorstellbaren Mengen
2. Microglossum rufescens
3. Beim Fotografieren von Heidekeulen, fielen mit kleine, schwarze Pilze auf, die ein wenig an Stecknadeln erinnerten. Im Feld dachte ich erst an Sabuloglossum, aber zu Hause gab es dann schnell die Erkenntnis, daß es sich hier um Sarcoleotia globosa handelt. Insgesamt ein wenig kartierter Pilz mit Funden aus Schleswig-Holstein und Gütersloh und jetzt auch neu im Brachter Wald.
4. Geoglossum elongatum ss. Roobeek mit Sporen von 63-70 µm
5. Früher hätte man dazu einfach Helvella lacunosa gesagt...
6. Heute nutzt man den Pilz einfach als Substrat von Mycogone cervina
7. Zwei Kollektionen von Glutinoglossum pseudoglutinosum, gekennzeichnet durch einige (wenige) Asci mit 7-fach septierten Sporen. Makroskopisch fällt immer schon der sehr schleimige Stiel auf
8. Stellenweise wuchsen die Erdzungen in rauen Mengen
9. Geoglossum umbratile
10. Macrolepiota procera
11. Und ebenfalls neu fürs Depot (aber wahrscheinlich ein absoluter Massenpilz, der einfach nur übersehen wird): Epicoccum andropogonis ex Claviceps purpurea ex Molinia caerulea
Björn
Und vor allem, wenn die Phytos nicht den Phlox im eigenen Garten befallen haben
Björn
Hallo Claudia,
soweit ich das auf dem Foto beurteilen kann, sind die Uredosporen deines Rostes überall warzig. Damit ist deine Bestimmung als M. hiratsukanum korrekt! Phytos machen also auch durchaus Spaß
Björn
Hallo zusammen,
zwischenzeitlich hatte Karl mit auch noch geschrieben, daß er hier eher zu H.punicea tendiert. Was den Lamellenansatz angeht, paßt der bei den beiden stehenden Exemplaren definitiv besser zu H. punicea. Der liegende (den ich mit nach Hause genommen habe), ist da schon weniger klar und hat mich wohl mit in die falsche Richtung geschickt. Mittlerweile liegt besagtes Exemplar ja schon einige Tage bei mir im Kühlschrank und ist farblich etwas "reifer" geworden. Da erkennt man jetzt auch den Übergang zur typischen punicea-Farbe, die an Granatapfel erinnert. Also werde ich den Fund als solchen ablegen.
Björn
Hallo Karl,
wenn ich auch nur durchgehende Lamellen zähle und die gegabelten nur einfach zähle, komme ich von links nach rechts und von oben nach unten auf 18, 17, 16, 21, 17 und 18 Lamellen. Da mag man jetzt zwar eher zu entfernt stehenden Lamellen tendieren, aber eigentlich kann man die moderat dicht stehenden Lamellen aus dem Schlüssel auch nicht wirklich ausschließen.
Was die Form der Huthautzellen in der Hutmitte angeht, sind meiner Meinung nach H. tenuicystidiatus und H. pallidus im Rennen (H. foetens paßt ja schon rein makroskopisch von der Farbe her nicht). Ich werde da morgen Abend noch mal genauer reinmikroskopieren, aber die wenigen Huthautzellen, die ich auf meinen Bildern gut vermessen konnte, liegen bei 42.9 x 15.8 µm, 43.6 x 15.5 µm, 41.5 x 13.0 µm, 42.8 µm x 17.2 µm, 36.6 x 10.2 µm. Hier würde ich eine leichte Tendenz zu H. tenuicystidatus erkennen wollen, insbesondere auch was die Form angeht. In den Zeichnungen sieht man bei dieser Art einige Zellen, die taillenartig eingeschnürt sind und so etwas gibt es bei meinem Fund auch.
Wenn man sich die Caulozystiden anschaut, liegen deren Endzellen bei 17.6 x 5.7 µm, 18.2 x 7.2 µm, 9.8 x 7.2 µm, 13.9 x 6.0 µm, 21.1 x 4.3 µm, 32.2 x 6.1 µm. Das paßt eher zu H. tenuicystidiatus. Hier würde auch die Tatsache, daß die meisten Caulozystiden bräunlich gefärbt sind, gut ins Bild passen - zumindest wird diese Färbung in der Beschreibung nur dieser Art explizit erwähnt.
Meine Tendenz geht hier also im Moment eher zu H. tenuicystidiatus, aber ohne daß ich mich da wirklich vollkommen sicher fühlen würde.
Björn
Hallo zusammen,
von der bunten Saftlingsweide im Sauerland hatte ich ja schon berichtet. Nachdem wir dort den Vormittag verbracht hatten, ging es im Anschluß noch weiter auf eine Wacholderheide auf Kalk. Die hatten Tanja und Enno schon im Vorfeld der Alme-Tagung untersucht und waren dort von einer Leptonienwelle überrollt worden. Die Leptonien waren mittlerweile nur noch in alten Einzelexemplaren vorhanden, aber es gab trotzdem viele tolle Pilze.
1. An mehreren Stellen wuchsen Erdzungen, die sich aber alle als Trichoglossum hirsutum entpuppten
2. Cuphophyllus virgineus
3. Entoloma verae, Sporen 12.5+-1.0 µm x 8.0+-0.6 µm, Q=1.6+-0.1, 11.2-14.9 µm x 6.9-8.7 µm, Q=1.4-1.8
4. Ein kleiner Stinker aus dem Hodophilus foetens Aggregat. Hier darf jeder Mal Lamellen zählen und seine Ergebnisse präsentieren
5. Tricholoma batschii unter Pinus sylvestris
6. Phaeoclavulina abietina
7. Ramaria gracilis
8. Spilopodia nervisequa
9. Ramariopsis sp.
10. Clavulina coralloides f. bicolor
11. Suillus collinitus mit schön sichtbarem rosa Basalmycel
Sporen
Huthaut
Hymenialzystiden
Basidien
Caulozystiden
12. Lepista personata
13. Lepista panaeolus
14. Hier hatten wir im Feld erst an eine Lepista gedacht. Dann fiel uns aber auf, daß alle Fruchtkörper einen auffälligen Buckel hatten. Ein schneller Blick durchs Mikroskop zeigte dann klar: Infundibulicybe geotropa
Das Gebiet ist laut Literatur sehr bemerkenswert, weil es dort seit 200(!) Jahren Schafbeweidung gibt. Entsprechend habe ich es mir natürlich auch nicht nehmen lassen, eine ordentliche Dungprobe mitzunehmen. Einige Arten waren schon vor Ort erkennbar, aber mal schauen, was sich dort noch in Kultur weiter bildet. Das ist dann aber Material für einen separaten Beitrag im coprophilen Teil des Forums.
Björn
Hallo Florian,
wir waren uns da im Feld auch erstmal nicht ganz sicher (und hatten z.B. auch an H. splendidissima gedacht). Aber die Huthaut spricht dann schon für H. coccinea, weil H. punicea ja ein trockener Saftling ist:
Björn
Du kannst schon mal ein Ticket nach Stockholm für nächstes Jahr buchen
Björn
Hallo Claudia,
das mit dem Frost könnte auch den Saftlingen hier geblüht haben. Selbst im warmen Duisburg gab es die letzten beiden Tage morgens auf den Dächern etwas Reif. In der Eifel und im Sauerland wird es dann natürlich noch mal direkt kälter gewesen sein.
Björn
Hallo Claudia,
das wäre dann eine biologische Sensation, weil sich der Saftling dann durch die Entnahme seine Artzugehörigkeit geändert hätte. Der liegende Saftling ist nämlich einer von den dreien, die auf den vorherigen Bildern noch alle stehen.
Björn
Hallo Reinhard,
das erste halte ich für eine Melanoleuca. Und beim Rötling gilt wie immer: Ohne Mikro geht da nix. Wobei in dem Alter wahrschienlich auch mit Mikro nix mehr geht.
Björn
Hallo zusammen,
wie wir mittlerweile alle wissen, ist die Eifel im Herbst bunt vor lauter Saftlingen. Aber wenn man vom Ruhrgebiet aus in die andere Richtung aufbricht und im Sauerland endet, findet man dort auch einiges an bunten Wiesenpilzen. Deshalb haben sich Tanja und Jan-Arne am letzten Samstag dort getroffen und zwei Ziele ins Visier genommen. Hier zunächst mal die Funde von einer sehr mageren Saftlingsweide.
1. Gliophorus laetus
2. Entoloma conferendum
3. Clavulinopsis helvola
4. Hygrocybe ceracea
5. Bei Galerinchen weiß man ja (fast) nie, was man erwischt und auf einer Magerweide kann man ja auch mal etwas Besseres finden. Hier war es ohne Schnallen, mit viersporigen Basidien und Sporen von 12.1+-0.7 µm x 6.6+-0.4 µm, Q=1.8+-0.1, 11.2-13.2 µm x 5.7-7.1 µm, Q=1.7-2.0 am Ende aber "nur" Galerina clavata
6. Macrolepiota excoriata
7. Auch Spaßmacher gab es auf der Wiese: P. semilanceata
8. Hygrocybe coccinea
Björn
Hallo zusammen,
nachdem die Eifel vor zwei Wochen ja schon einiges an bunten Wiesenpilzen hervorgebracht hat, ging es am Freitag (in NRW ein Feiertag) direkt noch mal in ein anderes Saftlingsgebiet dort. Auch wenn einige Fruchtkörper schon etwas ausgeblaßt waren und eine Wiese relativ frisch gemäht war, bot sich ingesamt doch einiges fürs Auge.
1. Lepista nuda
2. Hier denkt man von Ferne erstmal: Wer hat denn da Äpfel auf die Saftlingswiese gekippt? Bei näherer Betrachtung stellt man dann aber fest, daß man in der Punicea-Oase gelandet ist! Hygrocybe punicea als Traumkollektion.
3. Tief im Moos lauert ein gemeingefährliches Tentakelmonster.... bei näherer Betrachtung stellte sich dann raus, daß die Wiesen stellenweise voll mit Ramariopsis robusta waren.
4. Hygrocybe quieta. Hatte zwar keinen wahrnehmbaren Wanzengeruch, aber mit diesem Habitus und Sporen von 9.4+-0.4 µm x 5.1+-0.3 µm, Q=1.8+-0.1, 8.8-10.2 µm x 4.5-5.6 µm, Q=1.7-2.1 paßt nichts anderes.
5. Cuphophyllus virgineus und Gliophorus psittacinus
6. Hier hatte ich im Feld auf Lepista paneolus getippt, da ja hübsche Wasserflecken vorhanden sind. Zu Hause dann die Ernüchterung: Das Sporenpulver ist rein weiß und die Sporen vollkommen glatt. Aber immerhin hab ich jetzt auch mal Clitocybe nebularis durchmikroskopiert.
7. Hygrocybe coccinea wuchs stellenweise in Massen oder um es mit Wutzi zu sagen: Als hätte da jemand Smarties ausgekippt
8. Hygrocybe ceracea mit Sporen von 7.2+-0.3 µm x 3.8+-0.2 µm, Q=1.9+-0.1, 6.7-7.6 µm x 3.5-4.2 µm, Q=1.7-2.1
9. Mucilago crustacea
10. Im angrenzenden Fichtenwald dann Lepista flaccida
11. Macrolepiota procera
12. Und auch die ersten Zungen streckten sich aus der Wiese: Trichoglossum hirsutum
Björn
