Hallo Andreas
So spontan fällt mir Neolentinus adhaerens ein, die Lamellen scheinen deutlich gesägt zu sein.
War der Hut harzig-klebrig? Merkt man am besten mit den Lippen.
Gruss Raphael
Hallo Andreas
So spontan fällt mir Neolentinus adhaerens ein, die Lamellen scheinen deutlich gesägt zu sein.
War der Hut harzig-klebrig? Merkt man am besten mit den Lippen.
Gruss Raphael
Hallo zusammen
Die Trockenheit hat meine Region mal wieder fest im Griff.
Auf der Suche nach feuchten Stellen landete ich heute in einem sandigen, schattigen, schwer zugänglichen Bruchwald.
Das Gebiet ist eigentlich wegen Steinschlaggefahr gesperrt, weiter vorne sieht man den Felssturz der vor ein paar Jahren hier runter kam.
Was tut man nicht alles für vier Pilze:
1:
Clitocybe truncicola hatte ich neulich schon. Als ich die letzten Exemplare entnahm, sah ich dass sie an vergrabenen Holzresten wuchsen.
Da war der Fall schon fast klar.
Die kleinen, fast subglobosen Sporen bestätigten die Bestimmung sofort.
2:
Eine schöne Gruppe von Gyromitra infula. Es gab noch viel mehr davon.
Es ist wohl wirklich G. infula. Die ähnlich G. ambigua hätte grössere Sporen.
3:
Dieser Erlenschnitzling wuchs hier zu Hunderten. Der fein schuppig-flockige Hut sagt eigentlich schon alles: Naucoria subconspera.
Sporen moderat warzig
Cheilozystiden recht schlank, mit langem Apex
4:
Einer der Erlenkremplinge. Die Dinger sind ja kaum bestimmbar. Aber mal schauen:
Die Sporen sind klein. Zwischen den drei Arten gibt es nur minimale Unterschiede, das hilft nicht weiter.
Auch die Zystiden sehen immer gleich aus und überschneiden sich in den Abmessungen.
HDS nur der Vollständigkeit halber.
Erlenkremplinge kann man am ehesten noch makroskopisch unterscheiden.
Nach Jargeat, Moreau et al. 2016 zeichnet sich P. rubicundulus s.str. durch eine spezielle Stielfarbe aus: "weiss bis blasscreme, bald blass schwefelgelb bis gelboliv, oft stärker gelb am Apex".
Insbesondere der intensiver gelb gefärbte Apex kommt offenbar bei keinem anderen Erlenkrempling vor.
Am Exemplar links kann man dieses Merkmal gut erkennen, weshalb ich geneigt bin die Kollektion als Paxillus rubicundulus s.str. zu bezeichnen.
Ob das wirklich stimmt, weiss ich vielleicht in ein paar Monaten.
Viele Grüss
Raphael
Hallo Sebastian
Wunderschöne Funde, Gratulation!
Es gibt ja inzwischen keine "einfachen" Pilze mehr. Hygrophorus agathosmus hat einen Doppelgänger bekommen: Hygrophorus agathosmoides, der auch in Europa weit verbreitet ist.
Gleicher Geruch, sieht sehr ähnlich aus, und ist wohl nur mikroskopisch zu unterscheiden.
In Persoonia 46 S. 295f. ist er gut beschrieben inklusive Unterscheidungsmöglichkeiten. An unserer Tagung letzte Woche hatte den jemand gefunden.
Gruss Raphael
Hallo Werner
Die hatten schon den typischen Jodoform-Geruch.
Ich sollte doch immer etwas mehr dazu schreiben. Habitat war ein Auwald, but gemischt aus Alnus, Salix und Picea.
Auf der Nadelstreu liegen sie nur für das Foto, sie wuchsen direkt daneben auf undefinierbarem Totholz, wo das Foto nix geworden wäre.
Aber ich hätte besser darüber nachdenken sollen, wo ich sie fotografieren
Gruss Raphael
Hallo Raphael,
was lässt dich denn bei der 2 P. diettrichii ausschließen? Der Hut reißt doch so schön radial streifig auf!?
LG, Chris
Hallo Chris
P. dietrichii hätte eine andere HDS-Struktur (kürzere, eher gestielt-blasige Zellen) und keine Pleurozystiden.
Gruss Raphael
Hallo zusammen
Vergangene Woche hatte unser Verband die Tagung der wissenschaftlichen Kommission in Champéry.
Die Bedingungen waren leider nicht optimal, aber mit etwas Fantasie fand man genug feuchte Gebiete mit interessanten Pilzen.
Mein grösstes Highlight war natürlich, dass Ditte uns mit ihrer Anwesenheit beehrte und einen fantastischen Vortrag hielt.
Aber auch aus der Pilzwelt kann ich ein paar schöne Sachen zeigen. Bitte korrigiert mich, wenn etwas nicht stimmt.
1:
Dieser winzige Mehlräsling war wohl noch nicht ganz ausgewachsen, die Hüte waren nicht breiter als 15mm.
Irgendwie hatte ich aber ein komisches Gefühl, dass es kein normaler Clitopilus prunulus sein könnte.
Die Sporen waren so wie man es bei Clitopilus kennt, mit Längsrippen.
An der Lamellenschneide gab es dicht gedrängte Cheilozystiden in mannigfaltiger Form.
Also vielleicht Clitopilus cystidiatus?
Aber dieser hier hatte ebenso viele Pleurozystiden, das hat C. cystidiatus nicht.
Mit Pleuros gibt es meines Wissens nur noch eine Art die in Frage kommt:
Clitopilus chrischonensis. Meine Exemplare rochen allerdings nach Mehl und waren viel zu klein, was beides nicht zu dieser kürzlich beschriebenen Art passt.
Da wird wohl eine Sequenzierung nötig sein.
2:
Diesen unglaublich grazilen Dachpilz habe ich als Pluteus semibulbosus bestimmt. Manche sehen darin ein Synonym von P. plautus.
Der linke Fruchkörper ging leider kaputt, als ich ihn mit einem Grashalm berührte.
Sporen recht klein, ansonsten typische Dachpilz-Sporen.
Zystiden nicht sehr zahlreich, zylindrisch, einige mit apikalem Fortsatz.
HDS im Zentrum aus zylindrischen oder keuligen Zellen.
3:
Kleine braune Pilze machen mir meistens Spass. Der hier ist recht bekannt, Simocybe centunculus.
Die Sporen sind bei Simocybe wenig aussagekräftig.
Zystiden zylindrisch oder leicht keulig
HDS zellig, nur mit kurzen Pileozystiden.
4:
Hieran habe ich lange herumgerätselt. Die Mikromerkmale lassen rasch vermuten, dass es ein Erlenschnitzling ist.
Aber leider fehlen in der Funga Nordica einige Arten dieser Gattung.
Sporen kräftig warzig und mit typischer Naucoria-Form.
Die Zystiden haben einen rundlichen Bauchteil und einen im Verhältnis enorm langen Hals, der teilweise leicht kopfig endet.
Das ist typisch für diese Art: Alnicola longicystis.
Pleurozystiden gab es wenige, in der Nähe der Schneide.
5:
Dieser trichterlingsartige Pilz unter Erlen hat mich viel Zeit gekostet.
Recht schnell war klar, dass es ein Lyophyllum ist, die Basidien sind siderophil. Aber dann welches...
Die Sporen sind winzig, maximal 5 µm lang. Leider gab es keinen brauchbaren Sporenabwurf.
Die Lamellenschneide ist heteromorph, mit zahlreichen kleinen Zystiden.
Im Moment finde ich nur eine Art die dazu passt, Lyophyllum minimisporum. Leider eine mediterrane Art...
6:
Noch ein Lyophyllum, das ich im Feld zuerst für einen Rötling hielt. Und ebenso schwierig, einen Namen dran zu schreiben.
Auch hier wieder stark siderophile Basidien.
Sporen etwas grösser, mit abgeschrägtem Apikulus und einem grossen Tropfen.
Ich komme irgendwo in die Nähe von Tephrocybe coracina, ohne jede Gewähr.
7:
Dieser kleine Holzpilz ist unverkennbar: Gymnopilus bellulus.
Kleine, kräftig warzige Sporen
Zystiden recht klein und kopfig.
8:
Ein zarter, trichterlingsartiger Pilz mit Mehlgeruch.
Hier ist der entscheidende Hinweis, dass die Sporen amyloid sind. Da passt nur Pseudoomphalina kalchbrenneri.
Schliesslich noch ein paar bekanntere Arten ohne Mikrobilder, damit ich euch nicht unnötig langweile.
Die Risspilze gingen alle über den Tisch von Ditte, deshalb verzichte ich auch bei denen auf Mikrodetails.
9: Mycena arcangeliana
10: Pluteus phlebophorus
11: Clitocybe fragrans
12: Inocybe geophylla ss. str.
13: Lepiota pseudolilacea
14: Lepista gilva
15: Arrhenia epichysium
16: Psathyrella bipellis
17: Galerina pseudomycenopsis
18: Inocybe nitidiuscula
19: Inocybe pelargonium
20: Cystolepiota seminuda
21: Inocybe pudica
22: Pholiotina vexans
Gruss Raphael
Hallo zusammen
Der Parfürmierte Trichterling befindet sich massiv in Ausbreitung. Im Moment noch sehr regional, aber das kann sich schnell ändern.
In den letzten zwei Jahren habe ich ihn zweimal gefunden, einmal passenderweise direkt neben einem Picknickplatz wo viele Schulklassen Rast machen.
Dieses Jahr hat mein Verein bei einem Ausflug etwa 100 Exemplare an verschiedenen Stellen gefunden.
Das Problem ist, dass ihn kaum jemand wirklich kennt, bei Pilzkursen sieht man ihn auch nie. Wenn man ihn einmal in der Hand und unter der Nase hatte, kann man ihn nicht mehr verwechseln.
Aber bis dahin ist es schon recht kritisch. Das ist der Unterscheid zu Stockschwämmchen/Gifthäubling: Die beiden hatte jeder schon x-mal in der Hand, die Unterschiede werden einem eingebleut. Beim Parfürmierten Trichterling kann selbst ein erfahrener Pilzkenner durchaus einen Fehler machen, weil er aus eigener Erfahrung nicht so genau weiss woran er ihn erkennt.
Nächstes Jahr machen wir nochmal einen Artikel in der SZP zum Thema, mit mehreren Fotos, denn er ist auch makroskopisch recht variabel.
Im neuen Buch von Winkler&Keller ist er ebenfalls beschrieben und abgebildet.
Pilzportrait ist übrigens auch im Forum vorhanden: Paralepistopsis amoenolens = Clitocybe amoenolens = Parfürmierter Trichterling
Gruss Raphael
Danke dir. Der Pfynwald ist ein trockener Föhrenwald, an der Stelle gab es aber auch einige Birken. Der Fundort ist etwa 750m hoch. Ich habe ihn mir bereits vorgemerkt für die Sequenzierung.
Lg, Raphael
Liebe Ditte
Danke dir, wie immer verblüfft es mich wie du es hinkriegst, Risspilze nur anhand von Bildern zu bestimmen.
Ich lege beide mal so ab. Zumindest die laurina schicke ich noch zur Sequenzierung, weil es der erste kartierte Nachweis für die Schweiz wäre.
Hast du übrigens meine andere Anfrage gesehen?
Die war zuunterst in einem Exkursionsbericht.
Viele Grüsse, bis Montag
Raphael
Hallo Werner
ok, danke dir. Wenn du es sagst, wird es stimmen
Ich war noch unschlüssig, frische Exemplare wären wohl besser gewesen.
Gruss Raphael
Hallo zusammen, bzw. Ditte
Ich habe in einem Auwald am Rhoneufer, ca. 550m, zwei Risspilze gefunden und habe wie so oft meine liebe Mühe mit der Bestimmung.
1:
Habitat: In einem eher trockenen Gebiet bei Kiefern auf sandigem Boden. Ohne speziellen Geruch.
Sporen: 8.1-9.0-9.8 x 5.0-5.6-6.4 µm, Q = 1.33-1.62-1.82 (n=20)
Cheilozystiden: 37.5-46 x 11.5-16.5 µm
Pleurozystiden ähnlich
Kaulozystiden nur im oberen Drittel vorhanden.
Ich meine es müsste eine Art aus der Gruppe um Inocybe virgatula sein.
2:
Eine intensiv gefärbte Gruppe mit schuppig aufreissendem Hut. Ja, das Bild ist unscharf. Darum gleich noch zwei weitere Bilder.
Habitat: Nahe am Flussufer bei Erlen, Birken und Zitterpappeln. Geruch spermatisch. Stiel auf der ganzen Länge bereift.
Sporen: 8.3-9.6-10.3 x 4.6-5.3-5.6 µm, Q = 1.71-1.82-1.96 (n=20)
Cheilozystiden intensiv gelb in KOH, 43.5-73.0 x 15.5-22.5 µm
Pleurozystiden ähnlich.
Kaulozystiden im oberen Stieldrittel: Sehr zahlreich, dazwischen viele kleine, keulige Parazystiden.
Im unteren Stieldrittel findet man weniger metuloide Kaulozystiden, aber immernoch viele keulige Elemente.
Mit den gängigen Schlüsseln komme ich in die Nähe von Inocybe pholiotinoides, die es aber sicher nicht sein kann, die Zystiden sind viel zu bauchig.
Einen wirklich valablen Vorschlag habe ich nicht.
VIele Grüsse
Raphael
Hallo zusammen
Die letzten Tage war ich in verschiedenen Auwäldern, wo es trotz der Trockenheit überraschend viele Pilze gab. Ein paar Highlights:
1:
Picipes melanopus badius, nicht mehr taufrisch.
2:
Ein samtig wirkender Pilz auf Holz: Simocybe sumptuosa.
Sporen leicht phaseoliform.
Cheilozystiden keulig
Pileozystiden sehr gross
3:
Ein trichterlingsartiger Pilz auf Holzresten: Clitocybe truncicola.
Sporen breit elliptisch und klein, nicht länger als 5 µm.
4:
Eine Telamonia, die ich für einen banalen Cortinarius brunneus halte.
Sporen deutlich warzig, bis 9.5 µm lang.
5:
Ein Schüppling auf Holzresten, den man auch makroskopisch ansprechen kann: Pholiota lucifera.
Sporen leicht phaseoliform
Cheilozystiden schlank keulig, keine Chrysozystiden.
6:
EInzelexemplare lasse ich meist stehen... aber der hier war so schön prägnant. Pholiota tuberculosa.
Sporen etwas schlanker als beim vorherigen.
Cheilozystiden deutlich kopfig.
7:
Pluteus salicinus erkennt man in der Regel schon am Standort.
Sporen klein, rundlich oder breit elliptisch.
Cheilozystiden keulig.
Pleurozystiden als Hakenzystiden.
HDS eine Kutis aus gestreckten Zellen, mit Schnallen.
Es folgt noch ein Beitrag für zwei Risspilze.
Viele Grüsse
Raphael
Hallo zusammen
So, ich war nochmal dort. Es gibt dort tatsächlich Zitterpappeln in unmittelbarer Nähe.
offtopic
Beim genaueren Suchen fand ich einige Meter entfernt auch zwei verschiedene Pappelschüpplinge:
Anständiger Pappelschüppling (Hemipholiota destruens)
Unanständiger Pappelschüppling (Hemipholiota phalloides)
/offtopic
Ich lege das somit mal als Cortinarius sobrius ab. Das wäre der erste kartierte Nachweis für die Schweiz.
Danke Andy und Günter für die Unterstützung!
Gruss Raphael
Hallo Günter
Ah, von C. sobrius habe ich nur das Portrait von AMB angeschaut, das oben verlinkt ist.
Dort ist die KOH-Reaktion wohl falsch angegeben. Im AdC wird eine starke Reaktion im Fleisch angegeben.
Ich gehe nochmal schauen, ob dort Zitterpappeln wachsen.
Gruss Raphael
Hallo Andy
Die Bestimmung von Kremplingen ist der Horror...
lies dir hier in dem Thread mal den Beitrag von Christoph durch: Paxillus validus, Großer Krempling
P. validus gilt wohl derzeit als Synonym von P. ammonioviresecens.
Für mein Gefühl ist der Stiel zu schlank für P. validus/ammoniovirescens, aber ich hatte den auch noch nie in der Hand.
Wenn du Erlen in der Nähe nicht ausschliessen kannst, müsstest du auch im rubicundulus-Komplex noch schauen:
Jargeat,P;Moreau,P-A;Gryta,H;Chaumeton,J-P;Gardes,M. 2016. Paxillus rubicundulus (Boletales, Paxillaceae) and two new alder-specific ectomycorrhizal species, Paxillus olivellus and Paxillus adelphus, from Europe and North Africa. Fungal Biology. 120(5):711-728
Ich weiss nicht ob man den Artikel irgendwo gratis bekommt, habe auf die Schnelle keinen Link gefunden.
Da gibt es inzwischen drei Arten.
Paxillus adelphus kann mühelos so gross werden, und hat typischerweise diesen schlanken, verjüngten Stiel.
Hier: Paxillus obscurisporus?
Paxillus olivellus müsste man an mehrheitlich ovoiden Sporen erkennen. Auf deinen Mikrobildern sieht man zu wenig Sporen für eine valide Einschätzung, die Tendenz geht aber eher Richtung subzylindrisch.
Christoph ist leider kaum mehr aktiv hier im Forum...
Gruss Raphael
Hallo Raphael
Hast du bereits mit dem Cortinarius sobrius verglichen? Der Hohlraum im Stiel, ähnlich zu Hebeloma ist recht typisch für diese Art.
http://www.ambpesaro.it/portfo…em/cortinarius-sobrius-2/
BG Andy
Hallo Andy
Habe mir den mal angeschaut, da scheint aber die KOH Reaktion umgekehrt zu sein, gelb aussen und im Fleisch negativ.
Gruss Raphael
Hallo,
Ne das sind schon Phlegmacien. Makroskopisch könnte man das schon Zweifel haben. Aber alle Fälblinge haben auffällige Zystiden, der hier hatte nicht einmal Marginalzellen.
Gruss Raphael
Hallo zusammen
Vor ein paar Tagen war ich in einem Auwald unterwegs, wo ich eine Gruppe Phlegmacien fand. Leider habe ich (wie erwartet) Mühe mit der Bestimmung:
Ich hatte drei ungeduldige Kinder dabei, deshalb hatte ich nicht die Zeit alle Bäume in der Nähe zu notieren.
Es gab sicher Birken und Erlen. Vielleicht auch Weiden, Pappeln und Kiefern.
Geruch unangenehm, schwer zu definieren. Ganz junge Exemplare waren leider nicht zu finden.
Die Stielbasis ist gerade oder etwas verdickt. Was hier im Schnittbild wie eine Knolle aussieht, ist eine Wuchsanomalie.
An der Luft verfärbt sich das Fleisch nicht, reinweiss, nur in der Basis gelblich.
KOH: Aussen negativ, auf dem Fleisch deutlich gelb.
Sporen etwa 10-12 x 6-6.5 µm, schwach warzig.
All meine Schlüsselversuche enden in Sackgassen. Was meint ihr dazu?
Viele Grüsse
Raphael
Hallo zusammen
beli 1 hatte mich letztes Jahr nach diesem Porling gefragt, vor allem nach der KOH-Reaktion.
Heute ist er mir an einem alten Lärchenstrunk begegnet:
Hab ihn auch kurz unters Mikroskop geworfen:
Und hier die ersehnte KOH-Reaktion (20%): Auf der Hutoberfläche fast negativ, Auf den Poren und am Stiel gelblich.
Gruss Raphael
Hallo Werner
Die Xylaria ist aber bestimmt X. hypoxylon.
Woran machst du das fest? Habe noch in "Nordic Ascomycetes" kontrolliert ob es wirklich stimmt.
Es gab etwa hundert Fruchtkörper, keiner davon verzweigt.
Gruss Raphael
Hallo zusammen
Nach meiner mageren Studienwoche war ich vorgestern in meinem Hauswald, und wurde von den Pilzen regelrecht erschlagen.
Eine Stunde im Wald, dann musste ich die Flucht ergreifen, es gab einfach zu viele schwierige Arten.
Hier einige schöne Kollektionen. Bitte korrigiert mich, wenn etwas nicht stimmt.
1:
Diesen leuchtend gelbbraunen Bovist fand ich spannend.
Im Schnitt sieht man eine kompakte Subgleba.
Capillitium vom Lycoperdon-Type, würde ich sagen.
Sporen fein punktiert.
Damit kommt eigentlich nur eine Art in Frage, die gemäss Jeppson auch mal gelbbraun sein kann: Bovista aestivalis.
2:
Rötlinge gab es in Unmengen. Aus Zeitgründen blieb ich auf dem Waldweg, wo ich auf fünf Metern fünf verschiedene Rötlinge fand.
Das hier sollte Entoloma lividocyanulum sein.
Sporen eher klein, heterodiametrisch. Basidien 4-sporig, ohne Schnallen, keine Zystiden.
Pigment körnig-intrazellulär.
3:
Hier ist der leicht gelbliche Stiel wichtig: Entoloma politoflavipes.
Sporen klein, selten länger als 8 µm. Basidien 4-sporig, mit Schnallen. Keine Zystiden.
HDS mit intrazellulärem Pigment.
4:
Entoloma porphyrogriseum wollte mir seine Farbvariationsbreite zeigen. Sicherheitshalber nahm ich alle drei Kollektionen mit, mikroskopisch identisch.
Cheilozystiden, zylindrisch oder fusiform
HDS mit schwärzlichem Pigment
5:
Wer im DGfM-Forum mitliest, kennt den schon: Entoloma cf. subcuboideum
Sporen kubisch oder pentagonal
Lamellenscheide fast steril, dicht besetzt von Cheilozystiden.
HDS...
... und Kaulozystiden. Die meisten davon zylindrisch oder keulig, nur sehr wenige mit apikalem Auswuchs.
6:
Flammulina fennae ist ein treuer Besucher in diesem Wald.
Der Sporenabwurf ist missglückt, deshalb nur ein ärmliches Sporenpräparat.
Cheilozystiden
Bei Flammulina ist die HDS wichtig, deshalb habe ich mal einen Stack (am Hutrand) gemacht.
Die grossen Elemente sind Pileozystiden. Die kleineren Elemente sind die Grundstruktur:
Teils hymeniforme (gestielt-blasige) Elemente, aber auch viele irregulär geformte Ixohyphidien.
7:
Für den brauche ich mal wieder den Rat von Ditte :
Habitat: Kalkboden bei Pinus, Picea, Betula
Sporen: 8.4-9.2-10.2 x 4.6-6.5-7.2 µm, Q=1.27-1.44-1.94 (n=20)
Cheilozystiden etwa 47-55 x 15-20 µm
Pleurozystiden etwas länger. Unter den Kristallen haben viele Zystiden kleine Körnchen.
Kaulozystiden am ganzen Stiel reichlich vorhanden.
Die Funga Nordica führt mich zu Inocybe leiocephala. Die ist es aber wohl nicht, wenn man neuere Literatur berücksichtigt.
Nach Larsson et al. 2014 komme ich am ehesten auf Inocybe lindrothii.
Viele Grüsse
Raphael
Hallo zusammen
Ich komme gerade aus einer mykologischen Studienwoche zurück. Wie vielerorts hatten wir grosse Mühe Pilze zu finden.
Die wenigen Funde musste man sich hart verdienen, indem man stundenlang durch Wälder, Moore und Gebüsch kroch.
Aber immerhin gab es ein paar Highlights.
Auf dem Weg zur Tagung machte ich einen Abstecher in die subalpinen Grünerlen. Dort gab es einige schöne Kollektionen:
1:
Dieser bereifte Trichterling ist wohl trotz des speziellen Habitats einfach Clitocybe rivulosa.
2:
Ein Helmling, keine super Kollektion, aber man muss halt nehmen was man findet. Geruch nach Chlor.
Ich habe ihn als Mycena arcangeliana bestimmt.
Igelige Cheilozystiden.
3:
Ascomyceten bearbeite ich selten, aber der hier sollte klar sein. Er wuchs an toten Grünerlen-Zweigen: Rutstroemia alnobetulae.
Die Jod-Reaktion an den Asci konnte ich nur mühsam nachweisen, aber man kann sie erkennen.
Die Sporen sind sehr lang, um 20 µm, und wurstförmig.
Dann waren wir zweimal in einem Auwald, der immer für Überraschungen gut ist.
4:
Amanita echinocephala gab es immer mal wieder. Und massenhaft Amanita strobiliformis (kein Bild).
Wir haben mit vereinten Kräften nach der darauf wachsenden Squamanita schreieri gesucht, leider ohne Erfolg.
5:
Ein kleiner Mehlräsling, Clitopilus scyphoides var. omphaliiformis.
Sporen undeutlich gerippt.
6:
Der hier hat mich mit seinem schleimigen Hut in die Irre geführt. Es hatte kurz zuvor geregnet, später trocknete der Hut ab.
Dann war klar, dass es ein Rötling ist, nämlich Entoloma excentricum.
Die typischen, gestreckten Cheilozystiden.
7:
Dieses kleine Pilzchen an einem bemoosten Stumpf ist nichts alltägliches: Callistosporium elaeodes.
Sporen in Ammoniak mit dem gattungstypischen, lichtbrechenden Tropfen.
8:
Um Holzkeulen kümmere ich mich sonst nicht, aber die hier fand ich schön. Xylaria longipes.
Für ein gutes Präparat braucht man eine Axt. Aber ein paar Sporen konnte ich dann doch entdecken.
Dann noch ein paar Sachen aus verschiedenen Hochmooren:
9:
Entoloma elodes tauchte die ganze Woche immer wieder auf.
Auch dieser Rötling hat spezielle Zystiden.
10:
Ein kleines Pilzchen am Seeufer, zwischen oder an Sumpfpflanzen: Simocybe laevigata.
Sporen glatt, ohne Keimporus, nicht dextrinoid
Lamellenschneide steril, mit zahlreichen Cheilozystiden.
HDS hymeniform, aus gestielt-blasigen Zellen.
11:
Galerina tibiicystis
Sporen in Kongorot
Cheilozystiden tibiiform.
Viele Grüsse
Raphael
Hallo Andy
Es gibt nur wenige blauende Lyophyllum-Arten.
Ich habe mit deiner Bestimmung keine Probleme. Schöner Fund, gratuliere!
Gruss Raphael