Hallo Leute!
Blamieren tut sich hier so schnell keiner mit seinen Tipps zur Bestimmung...
Apropos Tipp: Für mich sieht das erst mal wie ein Schichtpilz aus...
Hallo Leute!
Blamieren tut sich hier so schnell keiner mit seinen Tipps zur Bestimmung...
Apropos Tipp: Für mich sieht das erst mal wie ein Schichtpilz aus...
Hallo Ulla, hallo Toffel...
Vielen Dank euch beiden für die Bestimmung. Trichia varia wird ja schon bei Baumann sehr varaibel dargestellt, und so wie jetzt hatte ich sie noch nicht gesehen. Sehr interessant auf jeden Fall.
Hallo liebe Myxomyceten Freunde
Gestern fand ich in unserem Garten einen Schleimpilz, den ich noch nicht kenne. Gefunden habe ich ihn bei einem unserer Brennholz-Lagertürme auf Weide.
Entschuldigt bitte für das Makrofoto. Ich weiß, es istnicht gut. Vielleicht hilft es aber trotzdem.
Die Sporocarpien erinnern dabei mit ihren bordeauxroten Ausprägungen erst mal an eine große Nectria. Im "Detaill" wird dann sichtbar, dass die Peridie vergeht oder aufbricht und das gelbe Capillitium heraustritt. Diese roten Pusteln schienen - unter der Stereolupe betrachtet - außerdem sehr hart zu sein.
Dann noch zwei Mikro-Bilder:
Capillitium bei 400x Vergrößerung
Und dann die Sporen, wobei die mir alle sehr kollabiert vorkamen. (15-16 x 11-13 µm )Interessant vielleicht, dass zwar einige frei im Wasser schwammen aber ein großer Teil in Ketten von bis zu 10 Sporen zusammenhing. (Vielleicht ein Merkmal?)
Ich habe noch einiges an Material im Haus. Sollte noch etwas bestimmtes fehlen, was hilfreich wäre, kann ich gerne noch mal nach mikroskopieren.
Vielen Dank für eure Hilfe!
Hallo Fips...
Also zur "Schwefelkopf"-Mumie kann ich leider auch nichts mehr sagen.
Tja und dann zu dem Baum... Also auf den ersten Blick dachte ich an Kiefer - Bis ich dann auf Baumkunde.de einige Fichtenborken gesehen habe, die deiner hier gezeigten durchaus ähnlich sehen. Weißt du denn noch villeicht, ob Nadeln in der Nähe auf dem Boden lagen? Fichten hätten ja eher kurze Nadeln... zumindest unsere Forstfichte hier Picea abies. Bei Kiefern dürfen die schon mal relativ lang werden ... Das ist aber nur eine Milchmädchen - Bestimmung. (Auf dem Bild vermute ich längliche Nadeln .. aber ich auch n paar kurze ....) naja...
Vielleicht hilfts ja ...
Hallo Michael....
Ich versuchs mal was ... Trichaptum spec. (cf. abientinum) Violetter Lederporling... Aber ich würde nicht drauf wetten... Ich persönlich kenne jetzt keine direkten Verwechslungsmöglichkeiten ... und dieser Violette Schichtpilz ( Chondrostereum purpureum) scheidet wohl ziemlich sicher aus...
Hattest wahrscheinlich kein Stück mitgenommen wegen Sporenpulverfarbe?
Edit:
Noch kurz zu deiner Frage: Ist das auf Bild zwei auch Kiefer? Wenn ja weißt du noch wie morsch das Stück schon war? Mein Kandidat geht nämlich eher an festes Totholz. Danach sieht es zwar aus, aber wirklich sicher könntest das wohl nur du sagen. Bild zwei könnte demanch einen jungen Fruchtkörper vom Violettporling zeigen. Waren beide Fundorte denn weit entfernt? (Muss nix heißen). Jedenfalls blasst das Violett im Alter schon deutlich in Richtung blassbräunlich-rosabeige aus. Sehr variabel...
Halllo Ingo!
ZitatSieht trotzdem komisch aus das Anfärben mit deiner Reagenz. Hast mal draufgeschaut, was auf dem Fläschchen steht.
Hmm... bei mir steht auf dem Fläschchen nur ... Kongorot SDS und dann die Website vom Gminder - myko-shop.de... Mehr nicht ...
Kommt mir auch etwas blasser vor und mehr ins orange, obwohl es diesmal sicher das reine Kongorot war.
ZitatIch mache einen kleinen Tropfen (meist Wasser) auf meinen Objektträger, darin streife ich das kleine Pilzstück ab, dann kommt das Deckglas so drauf, dass das Pilzstück +- mittig liegt.
Ja das ist bestimmt besser. Ich habe mir jetzt am Donnerstag auch noch mal ein paar Detaills rund ums Mikroskopieren erklären und zeigen lassen. ... Ich denke das alles und Geduld wird mir weiterhelfen... Die nächste Orbilia kommt bestimmt...;) Ich hoffe, dass es dann schon etwas aussagekräftiger wird.
Ich danke dir jedenfalls sehr für deine stete Mühe und deine ausführlichen Erklärungen.
Hallo nochmal.
Ich habe nochmal alles versucht. Ehrlich. Und ich muss sagen: Diese Orbilia hat mich besiegt... fürs erste!
Ich habe versucht, die Tipps von Ingo und Sven anzuwenden. Das Herausoperieren des winziges Stückchens aus der Fruchtschicht des Becherchens war auch mit Stereolupe eine wahr Geschicklichkeits-Aufgabe. Aber es hat doch ganz gut geklappt, wobei ich allerdings - wie ich vermute - immer Teile des Excipulums dabei hatte. Ist das Excipulum in einigen Fällen sogar Bestimmungsmerkmal?
Naja, ich habe also noch insgesammt 6 Präparate erstellt. Das Hauptproblem war immer wieder, dass ich das winzige Stückchen auf dem Objektträger kaum noch sehen konnte und auch große Schwierigkeiten hatte, dann auf diesem Stückchen das Färbemittel aufzubringen.
Schließlich war ich dann soweit, und habe zuerst Kongorot auf den Objektträger gegeben und das winzige Stückchen dann direkt ins reine Kongorot. Kann man das so machen?
Danach wollte ich so dünn wie möglich quetschen, in der Hoffnung mal einzelne Paraphysen oder Asci sehen zu können.
Trotz 1000facher Vergrößerung bot sich mir auch dieses Mal ein schon bekanntes Bild - jetzt bei voll geöffneter Kondensorblende - (wegen angeblich höherer Auflösung und so...)
Immerhin hat das Färben besser geklappt.
Fazit: Immerhin weiß ich jetzt schon mal, dass Orbilia anscheinend sehr kleine Strukturen hat.
Ich hatte vor kurzem eine Scutellinia unter den Linsen - da sind die Ascis ... hmmm ...größer ... ein Traum...
Ich hatte mir vorab nochmal das Portrait zu Orbilia delicatula angesehen. Wieviel fach sind dort die gezeigten Asci und Paraphysen vergrößert? Und mit welchem Färbemittel (violett/lila) wurde gearbeitet? vlt. KOH?
Hallo Florian.
Ich habe zwar an Holunder noch keine Austern gefunden, denke mir aber, dass du da schon welche hast.
Zur Verzehrfähigkeit kann ich persönlich jetzt anhand der Bilder nicht viel sagen. Dazu muss ich die Dinger schon selbst in der Hand haben. Ich achte bei Austern (von Buchen) unter anderem auf die Farbe der Huthaut. Wenn sich da zu viel Braun zeigt werde ich vorsichtig. Generell wenn der Fruchttkörper nicht mehr frisch wirkt, sich zu trocken schon ledrig anfühlt.
Ich hatte letzes Wochenende solche Kandidaten, die wohl durch den NAchtfrost etwas stärker gelitten hatten. Waren so verschrumpelt blass, umbra braun. Gestern im Supermarkt hatte ich solche Austern aber auch in der Auslage gesehen - auch die hätte ich nicht mehr mitgenommen.
Auf Bild 1) den großen oben rechts kannst du bequem zum Aussporen schicken. Der ist auf jeden Fall nix mehr für die Küche. Da haste schon recht.
Wie gesagt, anhand von Bildern irgendwas zum Verzehrwert auszusagen, ist sehr schwierig und immer unverbindlich. Ich würde mich darauf nicht verlassen. Am besten nen Pilzberater oder gleich PSV kontaktieren; der kann dir dann gleich direkt am Objekt sagen, woruaf du achten solltest.
Hallo Norbert!
Zitataber erstmal brauch ich ein Mikroskop ,wo man echt was sieht.
Ja, das ist auch meine Erfahrung. Wenn du da wirklich in den Mikrokosmos einsteigen möchtest, wirst du wahrscheinlich gerne die entsprechenden Kosten auf dich nehmen. Ich kann nur eins sagen: Es lohnt sich auf jeden Fall! Man brauch dann nur viel Geduld und Zeit um dann auch mit dem Mikroskop richtig umzugehen. Auf eines kann man sich hier im Forum aber wirklich verlassen und das ist die Hilfe von den Profis.
Hallo Sven und Ingo!
Vielen Dank für euren Rat. Ich setze mich gleich noch mal dran und versuche, das Ergebnis zu verbessern. Zum Glück habe ich noch einige FK zuhause.
Zitat von "Ingo W"Hast du nichts zum Anfärben?
Bisschen dünner kannst du auch noch drücken, damit sich die Fruchtschicht etwas auflöst und du Einzelteile erkennen kannst.
Tja Ingo... du wirst lachen (oder vllt. auch weinen;) ), denn beide Präparate habe ich in Kongo (SDS) mikroskopiert. Wahrscheinlich völlig verkehrt, denn wie ja jeder sieht - sieht man eben keine Anfärbung. Bei den Ständerpilzen funktioniert das Anfärben etwas besser.
Da mag es zwischen Ständer- und Schlauchpilzen Unterschiede geben, die ich noch nicht kenne. Evtl. nimmt man auch ein anderes Mittel? Wie sieht es mit dem Einwirken aus? Dauert es bei Ascos länger, ehe die Strukturen das Färbemittel annehmen?
Und überhaupt: Mikroskopiert man dann ausschließlich im Färbemittel oder mit Wasser gemischt? Ersteres habe ich noch nicht probiert. Könnte da der Fehler liegen? Dass das Kongorot zu sehr verdünnt ist?
Ok, ich versuch dann mal noch dünner zu drücken, wobei ich jetzt schon in Sorge war, das DG zu zerdrücken... Wahrscheinlich hilft es, wenn ich noch weniger Material nehme...
... oder ich habe einfach nur Pech gehabt...
Hallo ihr Lieben...
Bei den ersten Touren in diesem Jahr gab es einmal mehr wieder tolle, neue Eindrücke der Pilzwelt mit ihrer Reaktion auf das eher milde Wetter.
Neben den vielen bekannten Pilzen gesellen sich aber immer auch welche, die sich gar nicht so einfach ansprechen lassen, wozu auch mein neuer Kandidat gehört. Ich muss dabei sagen, dass der Pilz wahrscheinlich nicht benannt werden kann, weil das mit dem Mikroskopieren nicht wirklich gut gelaufen ist - dazu weiter unten mehr.
Gefunden habe ich in inmitten eines kleinen Holzlagers. Links unten ein Stück herausgezogen, was dann auch gleich wegen starker Vermorschung ordentlich zerfiel. Die oberen Äste sind Birke; zu welchem Substrat das betreffende Holzstück gehört, kann ich leider nicht genau sagen. Möglich wären noch Kirsche oder Eiche.
1)
Erwähnenswert evtl noch, dass der Pilz völlig im Dunklen und scheinbar auf einem anderen weißen Pilzbelag wuchs.
2)
3)
mit blitz
4)
ohne blitz
Makroskopisch konnte ich den nicht wirklich ansprechen. Ich dachte zwar an Orbilia aber sicher nicht alle gelb bis orange-(hyalinen) Pilze sind Orbilien. Daher erhoffte ich mir durchs Mikroskop noch einiges an Detaills herauszufinden. Tja ... Und dann das:
5)
400fach vergrößert: Ich habe außer diesen hier keine Strukturen erkennen können, die in Richtung Ascis oder Paraphysen gehen.
6)
1000fach ... könnt ihr da irgendwas erkennen? Ich bin schon soweit zu sagen, dass der FK einfach noch zu jung war, und noch keine mikroskopierbare Fruchtschicht ausgebildet hat. Allerdings habe ich verschiedene FK mikroskopiert größere (1-2 mm) und die ganz kleinen (ca 0,5mm)
Was habe ich falsch gemacht? Bzw. was würdet ihr anders machen?
Danke für eure Hilfe!
Hallo Hans
Also bei a) wäre meine erste Vermutung: Krauser Adernzähling Plicatura crispa gewesen..
Hallo Norbert!
Das könnte in Richtung Reibeisenpilz - Hyphoderma radula gehen
Hallo...
In solchen Fällen mag unter Anderem auch der rotrandige Baumschwamm noch im Rennen sein... . Ist eben nicht so ganz eindeutig weil: "Pilz nur von der Seite".
Insgesamt bleibe ich aber erst mal beim FomFom
Edit: Substrat scheint Birke zu sein? Kann man das noch herausfinden? Oder kann das wer bestätigen ...?
Hallo Christian
Das könnte auf Zunderschwamm hinauslaufen... kann aber auch noch was anderes sein ... Hier gibts sicher genug Experten, die das absichern können.
Hallo Pilzfreunde.
Vergangenen Montag wurde auf dem Arbeitstreffen der APN das Buch: The Kingdom of Funghi von Jens H. Petersen rundgegeben.
Wahrscheinlich kennen es viele hier schon. Es beeindruckt durch die m.M.n. hervorragenden (makro- wie mikroskopischen) Aufnahmen der Pilze, und dazu passende, kurze Erläuterungen. Es wird ein ordentlicher Gesamtüberblick über das Reich der Pilze und charakteristische Eigenschaften der einzelnen Klassen und Ordnungen gegeben. Bilder aus aller Welt verdeutlichen Lebensweise und Biotope.
Für die Profis hier ist es wahrscheinlich "nur" ein weiteres Bilderbuch, aber für Neuinteressierte und solche, die am Anfang der mykologischen Erkenntnis stehen, mag dieses Buch durchaus eine Kaufempfehlung sein. Der Text ist - wie der Titel schon erahnen lässt, englisch, aber trotzdem gut verständlich. Wer schon etwas mehr Erfahrung mit der englischen Sprache in Bezug auf Pilze hat, wir wahrscheinlich gar keine Probleme haben.
Für knapp 25 Euro bei amazon finde ich, kann man hier nichts falsch machen.
Hallo Sven!
Geniales Portrait -- Vielen Dank!
Hallo ...
Na das sind ja schöne Aussichten für 2014. Scheint ja dieses Jahr alles etwas lockerer zuzugehen, was so Erscheinungszeiten angeht... Dem Wetter sei dank! Also von mir aus könnte das jedes Jahr so sein...
Morcheln im Januar --- I like!
Hallo! Ja die 10000 wird wohl heute oder morgen noch erreicht werden....
Wirklich aktiv sind davon aber auch - naja vielleicht 200-300? Ich denke dieses Forum lebt durch die Qualität der aktiven und wirklich Pilzinteressierten. Also insgesammt schätze ich mal 2500- 4000 Leute, die hier regelmäßig mitlesen und mitschreiben...
Wenn man sich manche Profile so anschaut, mag man doch eher an Werbeplatzhalter denken, als an aufrichtiges Pilzinteresse.
Hallo Florian..:)
Bild zwei und drei würde ich auch so sehen...
die 1 eigentlich auch ... scheint ja Laubholz zu sein.... kein stereum (Schichtpilz) in der Nähe .. (zumindest keins zu sehen ..) sonst käme ja auch noch T. aurantia infrage
Also früher hätte ich bei der 1 ganz klar Tremella mesenterica gesagt... aber mittlerweile bin ich da nicht mehr ganz so sicher ... auch seit dem ich gesehen habe, dass z.B. auch Gallerttränen (Dacrymyces) schon mal so ähnlich aussehen können.
Hallo Uwe...
Solche Berichte machen immer Freude ... Danke fürs zeigen...
Genießen wir das milde Wetter so lange wir es noch haben ...
Hallo Andi + Conny...
Schöne Bilder zeigt ihr da ...
die 9 also den Abgestutzen Drüsling kennne ich noch unter Exidia truncata... ist glandulosa damit synonym? ... Hatte das eher mit Exidia plana oder jetzt halt Exidia nigricans in verbindung gebracht
Hallo Michael!
Also bei Trametes sag ich mal: Ja... versicolor? ... Möglich. Die kommt ja schon mal sehr farbvariabel daher. Für alles weitere wären Bilder von der Unterseite ganz hilfreich.
Hallo Michael!
Willkommen im Forum!
Also, das mit dem Schwefelporling wäre auch meine erste Vermutung gewesen ... Je nach Witterung können die Fruchtkörper noch lange am Substrat sitzen und bleichen dann so creme-aschfarben aus... Könnte passen...
Hallo Ingo...
Ich habe damals bei PIN einfach die Postleitzahl meines Wohnortes eingetragen... Hat perfekt funktioniert...Denke mal dass das mit PIN gemeint war.
Edit: Habe grade mal versucht zu wechseln .. und hätte jetzt die gleichen Meldungen wie Ingo ... scheint wohl doch was gröberes zu sein.